特級馬血清

血清通常作為補(bǔ)充成分添加在基礎(chǔ)培養(yǎng)基內(nèi)使用。它能夠提供各種大分子蛋白，小分子量營養(yǎng)，水溶性成分的轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白，和其它一些細(xì)胞在體外所必需的成分，如激素和附著因子。血清可以結(jié)合或中和一些生長因子中的有毒成分，并提供培養(yǎng)基的緩沖能力。細(xì)胞培養(yǎng)時血清的添加依賴于基礎(chǔ)培養(yǎng)基的化學(xué)組成，培養(yǎng)細(xì)胞的類型，及所用的培養(yǎng)系統(tǒng)。

我們在提供細(xì)胞培養(yǎng)基、平衡鹽溶液、無血清培養(yǎng)基和試劑的同時，還提供高品質(zhì)的血清。我們對血清制備進(jìn)行全過程監(jiān)管。從血清收集到終產(chǎn)品檢驗(yàn)和內(nèi)部稽核的每一個步驟，我們都采用設(shè)備和標(biāo)準(zhǔn)操作程序，以確保整個過程中每個環(huán)節(jié)的產(chǎn)品質(zhì)量。對整個過程的控制可以保證產(chǎn)品的持續(xù)高品質(zhì)，降低不同批次的差異。

處理：全部血清：收集的血液均在冷藏條件下處理。血清和分離后立即將血清合并并冷凍。只有符合我們的檢測標(biāo)準(zhǔn)的血清才被接受作進(jìn)一步處理。

熱滅活血清：熱滅活是在56℃水浴中嚴(yán)格控溫30分鐘。透析血清：用10,000截留分子量的透析膜在0.15M的NaCl中進(jìn)行透析，直到葡萄糖水平低于5mg/dl(用鄰甲苯胺測試法檢驗(yàn))。γ射線照射血清：可按客戶要求對血清進(jìn)行γ射線照射。通過γ射線照射以滅活各種動物血清(包括胎牛血清、新生牛血清、豬血清和馬血清)中的病毒和支原體的方法已經(jīng)得到證實(shí)。研究證實(shí)照射劑量在30-45kGy為宜。血清在此照射后物理化學(xué)特性和細(xì)胞培養(yǎng)表現(xiàn)沒有變化。裝瓶：粗血清須通過一系列的過濾才成為成品。后的過濾步驟包括使用0.2um和0.1um的無菌過濾。胎牛血清須通過三次0.1um過濾，其他血清須通過0.2um過濾。終產(chǎn)品的質(zhì)量控制：我們采取以下方法對每一批次的產(chǎn)品選取一定數(shù)量的樣品進(jìn)行質(zhì)量控制分析：

化學(xué)檢測：使用低溫凝固點(diǎn)的方法檢測滲透壓，以保證符合產(chǎn)品規(guī)范。我們每天使用國家標(biāo)準(zhǔn)的技術(shù)研究所標(biāo)定的標(biāo)準(zhǔn)溶液對我們的滲透壓檢測儀器進(jìn)行校準(zhǔn)。同樣每天使用國家標(biāo)準(zhǔn)技術(shù)研究所標(biāo)定的標(biāo)準(zhǔn)溶液對pH計(jì)進(jìn)行校準(zhǔn)。

使用電泳圖譜鑒定血清的整體性質(zhì)。樣品被轉(zhuǎn)移到硝酸纖維素基質(zhì)中，并在緩沖體系內(nèi)遷移。條帶經(jīng)染色、清潔、干燥后用密度儀進(jìn)行掃描，以檢測白蛋白和球蛋白組分的相對濃度。為證實(shí)是否在適當(dāng)?shù)臈l件下進(jìn)行采血和處理，使用修飾的Fleming方法對血紅蛋白進(jìn)行分光光度檢測。

隨著動物年齡的增加，血清總蛋白含量也相應(yīng)地提高。使用自動化的Biuret方法進(jìn)行總血清蛋白的檢測，以確認(rèn)動物年齡并驗(yàn)證符合產(chǎn)品規(guī)范。使用色度計(jì)在不同波長下檢測樣品和Biuret試劑混合波的吸光度。自動計(jì)算結(jié)果后，與標(biāo)準(zhǔn)曲線比較，即可得到蛋白值(克/公升)。

穩(wěn)定性檢測程序：在每一個標(biāo)記為體外診斷的產(chǎn)品上顯示的效期表明了這個產(chǎn)品具有多長時間的效能。我們的穩(wěn)定性程序確定和證明了產(chǎn)品效期。我們定期監(jiān)測批量產(chǎn)品，確定產(chǎn)品在推薦貯存條件下具有可接受效果的時間長度。

微生物學(xué)檢測：所有血清使用Barile&Kern的大體積方法檢測支原體。在推薦方法的檢測范圍內(nèi)檢測結(jié)果是準(zhǔn)確的。樣品少應(yīng)該在肉湯中合并培養(yǎng)3個星期，同時要在瓊脂平板上進(jìn)行不少于4次傳代培養(yǎng)。在有氧和厭氧(95%氮，5%CO2)條件下，平板在36±2℃下孵育。在檢測過程中，每周對瓊脂平板進(jìn)行一次微生物生長情況檢驗(yàn)。使用Dienes染色法對懷疑被污染的瓊脂平板進(jìn)行支原體菌落的檢測。然后，對平板進(jìn)行再次鏡檢。對孵育肉湯瓶要定期進(jìn)行濁度和pH值變動的檢測。在推薦方法檢測范圍內(nèi)，所有血清也要使用Hoechst熒光DNA染色法進(jìn)行不可在肉湯中培養(yǎng)的支原體(包括M.hyorhinis屬)檢測。

病毒檢測：已知無外來物質(zhì)的細(xì)胞培養(yǎng)基須經(jīng)過在包含15%測試血清的生長培養(yǎng)基中進(jìn)行為期21天的三次傳代培養(yǎng)。使用對照培養(yǎng)基和已知對外來物質(zhì)為陰性的血清平行地維持陰性對照培養(yǎng)。整個期間，檢測所有的培養(yǎng)情況，以便發(fā)現(xiàn)是否存在病毒誘發(fā)的細(xì)胞形態(tài)改變或致細(xì)胞病變效應(yīng)。在1421天的培養(yǎng)期間，對含有檢測血清的平行培養(yǎng)瓶按下面標(biāo)準(zhǔn)病毒檢測方法進(jìn)行評估。

將其中一瓶檢測細(xì)胞用胰蛋白酶消化，然后把細(xì)胞分別加入到總面積為6cm 2 的六室載玻片上。同時準(zhǔn)備陰性對照載玻片。在檢測培養(yǎng)的單室載玻片上加入牛病毒性腹瀉病毒(BVDV)、牛細(xì)小病毒、牛腺病毒、狂犬病毒和呼腸病毒的染色劑，作為單個的陽性對照。再經(jīng)過7天培養(yǎng)(總共21天)，利用熒光抗體技術(shù)檢測病毒。

通過對檢測培養(yǎng)進(jìn)行蘇木精伊紅染色，觀察致細(xì)胞突變效應(yīng)(CPE)或其他病毒誘導(dǎo)效應(yīng)。檢測細(xì)胞是否存在CPE效應(yīng)、內(nèi)含物、多核體或其他異常效應(yīng)。

內(nèi)毒素檢測：我們用阿米巴變形細(xì)胞溶解物(LAL)凝膠法來檢測胎牛血清的內(nèi)毒素含量。

效能檢測：
對每一批次的胎牛血清，我們都進(jìn)行下述培養(yǎng)效能檢測。選擇血清重要的標(biāo)準(zhǔn)是其支持特殊細(xì)胞的生長能力。因此，除了保證血清通過嚴(yán)格的品質(zhì)控制，我們也同時在實(shí)驗(yàn)室條件下對血清的三個重要的培養(yǎng)效能進(jìn)行檢測：克隆效率、貼壁效果和二倍體成纖維細(xì)胞生長促進(jìn)。

克隆效率分析：克隆效率實(shí)驗(yàn)分析每一批胎牛血清促進(jìn)小鼠骨髓瘤細(xì)胞及其衍生的雜交瘤細(xì)胞的克隆和生長能力。下列產(chǎn)品
經(jīng)驗(yàn)證可用于該實(shí)驗(yàn)：
Sp2/0-Ag14(ATCC #CRL 1581)
P3x63-Ag8.653(ATCC #CRL 1580)

每一批胎牛血清都要分別在復(fù)制微量滴定平板上加入兩種血清濃度和兩種細(xì)胞接種量(10%血清和1cell/孔，4%血清和5cells/孔)的情況下進(jìn)行分析?？寺》治鼋Y(jié)果除以已確定的參照血清值得以歸一化。在許多日常雜交選擇程序中具有代表性的是高濃度的血清，而低濃度血清在設(shè)計(jì)血清批次細(xì)微差異放大檢測中有更為嚴(yán)格的測試。嚴(yán)格的1cell/孔測試是模擬單一雜交選擇的實(shí)驗(yàn)室條件。為每一批次胎牛血清提供的分析證明報告中的克隆效率值為兩次測試條件下的平均值。

克隆分析法：克隆分析法是在復(fù)式96孔板中加入兩種胎牛血清濃度(10%v/v)和(4%v/v)和兩種接種量的情況下進(jìn)行的。每一次化驗(yàn)中，同時測量前期已驗(yàn)證合格的一批胎牛血清，并將此測量值作為內(nèi)部參考標(biāo)準(zhǔn)。
克隆分析按下述方法進(jìn)行：

1．Sp2/0-Ag14(sp2)和P3x63-Ag8.653(653)在含有10%的胎牛血清的RPM1640中通常保持對數(shù)生長期。在顯微鏡下，利用臺盼藍(lán)排除法對活細(xì)胞進(jìn)行計(jì)數(shù)。

2．用RPM1640培養(yǎng)基將儲備細(xì)胞懸浮液進(jìn)行連續(xù)稀釋，使其達(dá)到預(yù)期的25cells/ml和5cells/ml接種濃度。準(zhǔn)備含有參照或測試胎牛血清的RPM1640培養(yǎng)基。將這種密度的細(xì)胞分配到各個分析生長培養(yǎng)基體積為0.2毫升的孔中，使其分別平均含有5個和1個細(xì)胞。

3．將96孔板放入36±2℃，4-6% CO 2 的潮濕培養(yǎng)箱孵育約1015天。

4．在孵育期間，用肉眼觀察平板并對用于克隆的孔進(jìn)行計(jì)數(shù)?？寺⌒拾聪铝蟹椒ㄓ?jì)算：克隆效率=(陽性孔平均數(shù)/孵育孔總數(shù))×100%

5．每一批次胎牛血清維持指示劑骨髓瘤細(xì)胞克隆效率的定量按照以下方法測得的相對克隆效率(RCE)進(jìn)行歸一化：RCE=檢測血清的克隆效率/對照血清的克隆效率貼壁效率分析：貼壁效率分析是利用已轉(zhuǎn)型的人類細(xì)胞系來檢測每一批血清促使持續(xù)貼附細(xì)胞系的生長能力。選擇已被驗(yàn)證可以檢測貼壁效率的細(xì)胞系A(chǔ)549(人肺腫瘤細(xì)胞，ATCC#CCL,185)，是因?yàn)樗梢詤^(qū)分一批血清維持細(xì)胞貼壁和繁殖能力的細(xì)微差異。

每一批次胎牛血清都要在兩種血清濃度和兩種細(xì)胞接種濃度下(10%血清和100cells/孔，4%血清和200cells/孔)測試三次。在36±2℃，4-6% CO 2 的潮濕培養(yǎng)箱孵育約1014天，對被染色的細(xì)胞菌落進(jìn)行計(jì)數(shù)即可得到其貼壁效率。將結(jié)果除以參考的對照血清得以歸一化。通過兩種血清濃度的測試，可以驗(yàn)證該批次血清在減量和標(biāo)準(zhǔn)水平下維持生長的能力。為每一批次胎牛血清提供的分析證明報告中的貼壁效率值為兩次測試條件下的平均值。

貼壁分析法：使用貼附分析檢測上述每一批測試血清。這種分析法針對每一個血清樣品使用一個6孔板(每室9.6cm 2 )，并可以對三個孔的數(shù)據(jù)進(jìn)行平均處理。每一次化驗(yàn)中，同時測量前期已驗(yàn)證合格的一批胎牛血清，并將此測量值作為內(nèi)部參考標(biāo)準(zhǔn)。

貼附分析按下述方法進(jìn)行：

1．A549細(xì)胞系用含有10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基，在36±2℃，以亞融合密度下進(jìn)行培養(yǎng)。

2．含10%(v/v)和4%(v/v)血清的DMEM由分別在22.5毫升和24毫升DMEM中加入2.5毫升和1毫升胎牛血清配制而成，終有效體積為25毫升。將5毫升含血清培養(yǎng)基分別加入6孔板的每一個孔中。

3．A549培養(yǎng)細(xì)胞先經(jīng)過胰蛋白酶消化，測定活細(xì)胞數(shù)，然后稀釋細(xì)胞懸浮液2,000cells/ml。

4．將0.1毫升細(xì)胞懸浮液加入200cells/孔室中，0.05毫升懸浮液加入100cells/孔室中。平板混合后放入36±2℃，5%CO 2 的潮濕培養(yǎng)箱孵育約1014天。

5．孵育后，取出平板，去除生長培養(yǎng)基，用亞甲基蘭-甲醇溶液對菌落進(jìn)行染色。

6．計(jì)算菌落形成，然后按下述方法計(jì)算貼壁效率：%貼壁效率=每孔菌落平均數(shù)/每孔孵育活細(xì)胞平均數(shù)×100

7．為方便比較，將測得的貼壁效率數(shù)值除以每批檢測血清的相對貼壁效率(RPE)得以歸一化：RCE=檢測血清的貼壁效率/參照血清的貼壁效率二倍體成纖維細(xì)胞生長：促進(jìn)生長分析用于檢測每一批胎牛血清維持難培養(yǎng)的人二倍體成纖維細(xì)胞長期生長的能力。

下列細(xì)胞系經(jīng)認(rèn)證可用于該實(shí)驗(yàn)：

WI-38(人二倍體肺成纖維細(xì)胞，ATCC#CCL 75)

WI-38細(xì)胞在含5%胎牛血清的低密度(2X10 5 /瓶)復(fù)式25-cm 2瓶中孵育，并進(jìn)行為期三個連續(xù)7天的傳代培養(yǎng)。在每一個培養(yǎng)期，細(xì)胞都從初始孵育密度開始傳代培養(yǎng)。壓力分層率、成倍繁殖數(shù)量和減量血清濃度是每批次促進(jìn)難培養(yǎng)二倍體細(xì)胞的生長血清的嚴(yán)格測試指標(biāo)。通過連續(xù)三代培養(yǎng)以減少前一次生長培養(yǎng)基的殘留影響，從而保證得到檢測批促進(jìn)生長能力的真實(shí)結(jié)果。為每一批次胎牛血清提供的分析證明報告為第三次傳代培養(yǎng)每復(fù)式培養(yǎng)瓶細(xì)胞數(shù)的平均值。將檢測值除以參考對照值得以歸一化。

二倍體成纖維細(xì)胞生長分析法：培養(yǎng)數(shù)代WI-38人類二倍體肺成纖維細(xì)胞，計(jì)算每一代的細(xì)胞總數(shù)。此項(xiàng)檢測所挑選出的胎牛血清批號能維持難以生長細(xì)胞、貼壁性細(xì)胞、正常的細(xì)胞株生長及存活。

1．準(zhǔn)備含5%檢測血清或已驗(yàn)證合格的參照血清生長培養(yǎng)基，基礎(chǔ)生長培養(yǎng)基為含L-谷氨酰胺的HBME：EBME(1：1)。按要求，在每一次流量變化和分析過程中進(jìn)行傳代培養(yǎng)時需配制含5%血清生長的培養(yǎng)基。

2．在低代培養(yǎng)水平時，將2X10 5 WI-38細(xì)胞加入各個含9.5毫升生長培養(yǎng)基的復(fù)式25-cm 2 培養(yǎng)基中。在不擰緊瓶蓋的情況下，將培養(yǎng)瓶放入4-6%CO 2， 36℃±2℃環(huán)境中，保持24小時。然后擰緊瓶蓋，將培養(yǎng)瓶放在36℃±2℃下孵育7天，在第2天或第3天全部更換培養(yǎng)基。

3．在第7天，用胰蛋白酶對每一個含參照或檢測血清的復(fù)式瓶中的細(xì)胞進(jìn)行消化得到一定數(shù)量細(xì)胞，然后合并并計(jì)數(shù)。將2x10 5 WI-38細(xì)胞加入含有新鮮生長培養(yǎng)基(已加入了與上一代同一批次的參照或檢測胎牛血清)的新的復(fù)式25-cm 2 瓶中，進(jìn)行細(xì)胞傳代培養(yǎng)。按第2步所述，將培養(yǎng)瓶進(jìn)行平衡并孵育。

4．如上所述經(jīng)過三代連續(xù)分析，在每一代結(jié)束時計(jì)算每一批參照或檢測血清的每瓶細(xì)胞平均數(shù)。后一代培養(yǎng)的各批檢測血清實(shí)驗(yàn)中的相對生長率(RGR)作為參照血清實(shí)驗(yàn)中獲得的細(xì)胞生長率分子：

%RGR=檢測血清實(shí)驗(yàn)中每瓶平均細(xì)胞數(shù)/參照血清實(shí)驗(yàn)中每瓶平均細(xì)胞數(shù)X100S f9細(xì)胞生長促進(jìn)分析。通過昆蟲分析可以保證您購買的胎牛血清批次可以維持S f9細(xì)胞的生長。收到產(chǎn)品后，您需要做的就是混勻血清，在56℃下熱滅活30分鐘。這種分析法也可以用于乳白蛋白水解產(chǎn)品、酵母和其它生長輔料作為原料的生物效能分析。該分析法的準(zhǔn)確性取決于是否用常規(guī)的細(xì)胞培養(yǎng)方案進(jìn)行培養(yǎng)。用臺盼藍(lán)染色排除法測得的細(xì)胞活性少不低于80%。

細(xì)胞生長分析法。

1．使用含10%檢測或參照熱滅活胎牛血清的已驗(yàn)證的Grace昆明培養(yǎng)基配制*檢測培養(yǎng)基。

2．將儲備Sf9細(xì)胞加入50毫升離心管中，在50Xg下離心5分鐘。然后將每支試管的沉淀物重新用含10%的檢測或參照熱滅活胎牛血清*培養(yǎng)基配制成懸浮液。

3．反試管顛倒幾次，然后每支試管倒出1毫升樣品。用臺盼藍(lán)染色排除進(jìn)行活細(xì)胞計(jì)數(shù)。

4．如果活性≥80%，把試管再顛倒幾次并取出0.25毫升樣品。然后用Coulter計(jì)數(shù)器進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù)。

5．將細(xì)胞加入Erlenmeyer瓶中，使其終細(xì)胞濃度為2.75X10 5 cells/ml。孵育后，再一次進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù)，以保證細(xì)胞密度為2.5X10 5 3.0X10 5 cells/ml。

6．將培養(yǎng)瓶放到搖床上，在27℃±1℃、80-90rpm條件下孵育96小時。

7．從每一培養(yǎng)瓶中分別取出0.25毫升樣品，用Coulter計(jì)數(shù)器進(jìn)行計(jì)數(shù)。同時取出一定量的樣品進(jìn)行細(xì)胞活性檢測。

8．將檢測細(xì)胞密度與參照細(xì)胞密度相比即可得到相對細(xì)胞密度(RCN)。

噬菌體檢測:我們利用溶菌斑分析法來檢測是否存在噬菌體。從每一批血清中取具代表性的樣品加入胰蛋白酶磷酸瓊脂中，并在其加入含有噬菌體敏感的大腸桿菌懸浮液(C-3000或K-12)。然后，混合物會在胰蛋白酶磷酸瓊脂平板上分層，在36±2℃環(huán)境下孵育約24小時后，觀察平板上溶菌斑的形態(tài)。

生化特征檢測。

血紅蛋白檢測：所有批次的胎牛血清我們都進(jìn)行了血紅蛋白的檢測，血紅蛋白含量低于《中國生物制品主要原輔材料指控指標(biāo)》(2000年版)公布的指標(biāo)。

效能檢測：其它血清

新生牛血清。檢測新生牛血清維持超過三代VERO細(xì)胞生長的能力。在每一個培養(yǎng)期，細(xì)胞都從初始孵育密度開始傳代培養(yǎng)?？蓪⑺媒Y(jié)果與使用含有已知特征的參照血清對照生長培養(yǎng)基獲得的平行結(jié)果進(jìn)行比較。

特級馬血清。每一批馬血清被檢測維持在含有檢測批血清的對照培養(yǎng)基上Sp2/0-Ag14(小鼠骨髓瘤)細(xì)胞生長的能力?？蓪⑺媒Y(jié)果與使用含有已知特征的參照血清對照生長培養(yǎng)基獲得的平行結(jié)果進(jìn)行比較。

血清的使用與儲存：正確的使用及保存血清，才能使血清發(fā)揮應(yīng)有的作用。

1. 儲存條件：血清一般儲存于－20℃，同時應(yīng)避免反復(fù)凍融。購買大包裝的血清后，首先要滅活處理，然后分裝成小包裝，儲存于－20℃，使用前融化。融化時好先置于4℃。融化后的血清在4℃不宜長時間存放，應(yīng)盡快使用。

2. 使用濃度：自從有了合成培養(yǎng)基，血清就是作為一種添加成分與合成培養(yǎng)基混合使用，使用濃度一般為5－20％，常用是10％。過多血清容易使培養(yǎng)中的細(xì)胞發(fā)生變化，特別是一些二倍體的無限細(xì)胞系，迅速生長之后容易發(fā)生惡性轉(zhuǎn)化。

關(guān)于血清使用中的常見問題

1.保存血清好的辦法？
我們建議血清應(yīng)保存在-5℃-20℃。若你一次無法用完一瓶，建議您無菌分裝血清恰當(dāng)?shù)臏缇萜鲀?nèi)，再放回冷凍。

2.如何解凍血清才不會使產(chǎn)品質(zhì)量受損？
我們建議您將血清從冷凍箱中取出后，先置于2-8℃冰箱中使之溶解，然后在室溫下使之全溶。但必須注意的是，溶解過程中必須規(guī)則地?fù)u晃均勻。

3.血清解凍后發(fā)現(xiàn)有絮狀沉淀物出現(xiàn)，該如何處理？
血清中沉淀物的出現(xiàn)有許多原因，但普遍的原因是由于血清中脂蛋白的變性造成的；而血纖維蛋白(形成凝血的蛋白之一)在血清解凍后，也會存在于血清中，亦是造成血清沉淀物的主要原因之一。但這些絮狀沉淀物，并不影響血清本身的質(zhì)量。
若您欲去除這些絮狀沉淀物，可以將血清分裝無菌離心管中，以400g稍微離心，上清液即可接著加入培養(yǎng)基內(nèi)一起過濾。我們不建議您以過濾的方法去除這些絮狀沉淀物，因?yàn)樗赡軙枞倪^濾膜。

4.何謂熱滅活？有必要做熱滅活嗎？
一般以56℃，30分鐘水浴來處理已解凍的血清，因?yàn)榇思訜岵襟E，可以使補(bǔ)體去活性，而補(bǔ)體所參與的反應(yīng)有：溶細(xì)胞活性，平滑肌的收縮，肥大細(xì)胞和血小板組胺的釋放，增強(qiáng)吞噬作用，淋巴細(xì)胞、巨噬細(xì)胞的趨化和激活。實(shí)驗(yàn)顯示，經(jīng)過正確處理的熱滅活血清，對大多數(shù)的細(xì)胞而言是不需要的。經(jīng)過處理的血清對細(xì)胞生長只有微小的促進(jìn)，或*沒有任何作用，甚通常因?yàn)楦邷靥幚碛绊懥搜宓馁|(zhì)量，而造成細(xì)胞生長速率的降低。
而經(jīng)過熱處理的血清，沉淀物的形成會顯著的增多，這些沉淀物在倒置顯微鏡下觀察，像是“小黑點(diǎn)”，常常會讓研究者誤以為是血清遭受污染，而把血清放在37℃環(huán)境中，又會使此沉淀物更增多，使研究者認(rèn)為是微生物的分裂擴(kuò)增。因此我們建議您，若非必須，您可以不需要做熱滅活這一步。如此以來，不但節(jié)省您寶貴的時間，更確保您的質(zhì)量！

5.如何避免沉淀物的出現(xiàn)？
我們建議您在使用血清的時候，注意正確的血清解凍步驟，并盡量避免滅活血清及長時間的將血清置于高溫環(huán)境中。

產(chǎn)品訂購說明：
1、絕大部分產(chǎn)品備有現(xiàn)貨，一般情況下都能訂貨當(dāng)日發(fā)貨。 
2、部分非常用產(chǎn)品，需提前1－2日預(yù)訂，海外期貨則需要提前3-6周預(yù)訂。 
3、部分產(chǎn)品價格會因貨期、批次等因素發(fā)生變化，若有變動以訂貨當(dāng)日新價格為準(zhǔn)。 
4、每日訂單截止時間為16點(diǎn)整，部分城市可到17點(diǎn)整，因超過截止時間造成當(dāng)日不能發(fā)貨的將于次日安排發(fā)貨。
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 參考文獻(xiàn)：
《Effect of Hypoxia on the Muscle Fiber Switching Signal Pathways CnA/NFATc1 and Myostatin in Mouse Myocytes》 作者:Lixin Li,Juan Wang,Yun Bai,Jingwei Li,Xiuju Yu,Xiaomao Luo,Zhiwei Zhu,Xiaoyan He,Yanjun Dong,Hongquan Li,Haidong Wang 期刊:Acta Histochemica 影響因子:4.239 PMID:31047685
《Generation of bioartificial hearts using decellularized scaffolds and mixed cells》 作者:Cailing Tong, Cheng Li, Baiyi Xie, Minghui Li, Xianguo Li, Zhongquan  author and Junjie Xia 期刊:BioMedical Engineering OnLine 影響因子:2.013 PMID:31164131